پایان نامه تولید اتانول و استات از گاز سنتز با استفاده از باکتری کلستریدیوم لانگالی

word 5 MB 31795 225
1390 کارشناسی ارشد مهندسی شیمی
قیمت قبل:۸۴,۰۰۰ تومان
قیمت با تخفیف: ۳۴,۸۵۰ تومان
دانلود فایل
  • بخشی از محتوا
  • وضعیت فهرست و منابع
  • پایان نامه دوره دکتری رشته مهندسی شیمی گرایش بیوتکنولوژی

    چکیده

    کلستریدیوم لانگالی یک باکتری استوژن به شدت بی هوازی است که می تواند روی اجزای گاز سنتز یعنی CO و H2/CO2 رشد کرده و در دما و فشار محیطی آنها را به اتانول و استات تبدیل کند. در طی این فرایند باکتری مسیر متابولیکی پیچیده ای از خود نشان می دهد که هر دو فاز استوژنیک (تولید اسید) و سالونتوژنیک (تولید حلال) را شامل می شود. در فرایند رشد هتروترفیک این باکتری تاثیر سوبستراهای آلی مختلف (فروکتوز، گلوکز، اتانول و استات) روی آغاز شیفت متابولیکی به سمت فاز تولید الکل بررسی گردید. نتایج فرایند تخمیر ناپیوسته نشان داد که استفاده از فروکتوز به عنوان سوبسترای آلی منجر به تولید نسبت مولی یکسان از اتانول (1/27 میلی مول در لیتر) و استات (3/26 میلی مول در لیتر) شد. در فرایند رشد اتوتروفیک باکتری با گاز سنتز به منظور کم کردن پتانسیل کاهشی محیط کشت و تغییر مسیر جریان الکترونها به سمت فاز تولید الکل، محلولهای کاهنده متفاوت (سدیم سولفید و/ یا سیستئین اسیدی با غلظتهای مختلف) در pH های اولیه مختلف (8/6 یا 9/5) محیط کشت در بیوراکتورهای ناپیوسته استفاده شدند. بیشترین نسبت مولی تولید اتانول به استات (65/0) در محیط کشت حاوی 07/5 میلی مول در لیتر سیستئین اسیدی و در pH اولیه 9/5 حاصل گردید که این مساله احتمالا به حضور الکترونهای بیشتر در این محیط مربوط می شد. برای تعیین پارامترهای بیوکینتیکی مربوط به نرخ رشد، مصرف سوبسترا و تولید محصول فرایند تخمیر گاز سنتز در بیوراکتورهای ناپیوسته با فشارهای مختلف گاز سنتز انجام گرفت. برای توصیف کینتیک نرخ رشد باکتری روی اجزای گاز سنتز (CO و H2) یک مدل رشد کینتیکی بر اساس سوبسترای دوتایی با استفاده از مدل لانگ برای CO و مونود برای H2 بسط داده شد. این مدل همچنین می توانست اثرات بازدارندگی CO در فشارهای بالا را روی رشد سلولها پیش بینی کند. مدلهای کینتیکی ولترا، اندرو و گمپرتز اصلاح شده نیز برای توصیف رشد سلول، مصرف سوبسترا و تولید محصول استفاده شدند. فرایند پیوسته تخمیر گاز سنتز در بیوراکتور همزده دو لیتری انجام گرفت. تاثیر پارامترهای عملیاتی مختلف همچون نرخ رقیق سازی مایع، شدت جریان گاز سنتز به درون بیوراکتور و دور همزن روی عملکرد محیط کشت بررسی شد. بیشترین نرخ تولید ویژه (0048/0 مول بر گرم سلول بر ساعت)، بازده محصول (178/0 مول محصول به ازای هر مول سوبسترا) و نسبت مولی تولید اتانول به استات 73/0 (با 30 و 41 میلی مول در لیتر اتانول و استات) در نرخ رقیق سازی مایع 018/0 (بر ساعت)، شدت جریان گاز 12 (میلی لیتر بر دقیقه) و دور همزن 500 (rpm) حاصل گردید. 

    واژگان کلیدی

     اتانول، استات، کلستریدیوم لانگالی، تخمیر گاز سنتز

     

    1           فصل اول: مقدمه

     

    1-1       مقدمه

    از آغاز قرن بیستم، تولید سوخت و ترکیبات شیمیائی از گاز سنتز به عنوان روشی برای تولید سوختهای تجدید پذیر مورد توجه جوامع علمی و صنعتی قرار گرفت. هر چند، بیشتر پیشرفتها و اکتشافاتی که در این زمینه انجام گرفته است به استفاده از فرایندهای کاتالیستی و کاتالیستهای پایه فلزی مربوط می شود. اخیرا، توجه محققین و پژوهشگران به تولید سوختهای بیولوژیکی و ترکیبات شیمیائی از گاز سنتز از طریق روشهای بیولوژیکی معطوف گردیده است چرا که استفاده از میکروبها به عنوان بیوکاتالیست مزیتهایی را نسبت به کاتالیستهای پایه فلزی به همراه دارد.

    امروزه تلاشهای فراوانی در جهت تولید سوختهای بیولوژیکی صورت می گیرد اما این مساله تبدیل به یکی از موضوعات بحث برانگیز در جوامع علمی و انسانی گردیده است. تولید سوختهای بیولوژیکی نسل اول[1] از منابع غذایی با توجه به نیاز مبرم بسیاری از کشورها به غذا امری غیر اخلاقی تلقی شده و همواره مورد انتقاد قرار گرفته است. تخمیر گاز سنتز برای تولید سوختهای بیولوژیکی نسل دوم[2] می تواند پاسخگوی بخش عمده ای از انتقادها نسبت به تولید سوخت از محصولات غذایی باشد. تولید سوختهای بیولوژیکی نسل دوم از منابع غیر غذایی، عموما ضایعات کشاورزی و پسماندهای آلی، شامل دو تکنولوژی اساسی است که در آن ابتدا بیومس تبدیل به گاز شده و سپس گاز سنتز تولید شده به عنوان سوبسترا در فرایند میکروبی یا کاتالیستی به سوخت بیولوژیکی تبدیل می گردد.

     با وجود مطالعات و تحقیقاتی که به تازگی روی فرایند تخمیر گاز سنتز به عنوان روشی پایدار و تجدید پذیر برای تولید سوختهای بیولوژیکی صورت گرفته است، این فرایند همچنان یک تکنولوژی تکامل نیافته محسوب می گردد و لازم است چالش های تکنیکی و اقتصادی مختلفی را قبل از تجاری سازی این فرایند مرتفع ساخت. 

     

    1-2      سوختهای بیولوژیکی

    تولید جهانی سوختهای بیولوژیکی در دهه اخیر به سرعت افزایش یافته است اما این صنعت رو به رشد نگرانی های مهمی را با خود به همراه داشته است. سوختهای بیولوژیکی نسل اول از منابع غذایی اولیه مانند نشاسته، قند، روغنهای گیاهی و چربیهای حیوانی تولید می شوند. با وجود آنکه تولید سوختهای بیولوژیکی نسل اول مانند تولید اتانول از ذرت در ایالات متحده، اتانول از نیشکر در برزیل و بیودیزل از کلزا و آفتابگردان در اروپا همچنان به عنوان فرایندهای تجاری سازی شده ادامه دارد، اما با وجود انتقادهای فراوان نسبت به پایداری تولید این سوختها و رقابت آنها با تولید مواد غذایی، سوختهای بیولوژیکی نسل دوم مورد توجه فراوانی قرار گرفته اند [1]. سوختهای بیولوژیکی نسل دوم از بیومسهای لیگنوسلولزی[3] که منبع غذایی نباشند تولید می گردند. نمایی کلی از منابع اولیه ای که برای تولید سوختهای بیولوژیکی نسل دوم مورد استفاده قرار می گیرند در شکل 1-1 ارائه شده است [1, 2]. به طور کلی، این مواد اولیه به ضایعات کشاورزی، پسماندهای آلی و بیومسهایی که رشد سریع دارند و به منظور تولید انرژی کشت می شوند[4]، تقسیم بندی می گردند. بنابراین، سوختهای بیولوژیکی نسل دوم مزایایی همانند استفاده از ضایعات و پسماندها و استفاده از زمینهای بایر به خصوص در مناطق روستایی دارند. هرچند، چنانچه تولید این سوختها با محصولات غذایی بر سر زمینهای موجود رقابت کند مناسب بودن این سوختها از لحاظ پایداری تولید مورد تردید قرار خواهد گرفت. نگرانی دیگری نیز در این زمینه وجود دارد که برداشت بی رویه ضایعات کشاورزی به منظور تولید سوخت و انرژیهای بیولوژیکی، تاثیر منفی روی حاصل خیزی خاک و کیفیت آن خواهد داشت [3].

    Abstract

    Clostridium ljungdahlii is a strictly anaerobic acetogene able to grow on CO and H2/CO2 as synthesis gas components and ferment them to ethanol and acetate under ambient temperature and pressure. In this process, the bacterium presents a complex metabolic pathway including both the acetogenic and solventogenic phases. During the heterotrophic batch cultivation of the bacterium, the effect of various carbon sources (fructose, glucose, ethanol and acetate) on triggering the metabolic shift toward solventogenesis was considered. The fermentation results demonstrated the equimolar production of ethanol (27.1 mM) and acetate (26.3 mM) in the presence of fructose. During the autotrophic growth of the bacterium with synthesis gas for lowering the redox potential of the growth medium and alteration of the electron flow toward solventogenesis, various reducing solutions (sodium sulfide and/or cysteine-HCl with various concentrations) at different initial medium pH (6.8 or 5.9) were used in the batch bioreactors. The results suggested the plausible provision of more electrons into the culture in the presence of 5.07 mM cysteine-HCl at the medium pH 5.9, as a promoted ethanol to acetate molar ratio of 0.65 was achieved in this culture. In order to determine the intrinsic growth, substrate uptake and product formation biokinetic parameters in synthesis gas fermentation process, the bacterium was grown in various pressurized batch bioreactors. A dual-substrate growth kinetic model using Loung for CO and Monod for H2 was developed to describe the growth rate kinetics of the bacterium on these substrates. This model also accommodated CO inhibitory effects on cell growth at high CO partial pressures. The Volterra model, Andrews and modified Gompertz were respectively adopted to describe the cell growth, substrate uptake rate and product formation. Continuous synthesis gas fermentation experiments were carried out in a 2.0 L CSTR bioreactor. The effects of various operation parameters including liquid dilution rates, synthesis gas flow rates and agitation speed on the culture performance were assessed. The highest specific production rate (0.0048 mol g-1cell h-1), product yield (YP/S=0.178) and ethanol to acetate molar ratio of 0.73 (with 30 mM ethanol and 41 mM acetate) was achieved at the dilution rate of 0.018 )h-1(, gas flow rate of 12 )ml min-1( and agitation speed of 500 )rpm(.    

     

    Key words: Ethanol, Acetate, Clostridium ljungdahlii, Synthesis gas fermentation

  • فهرست:

    چکیده. ب‌

    واژگان کلیدی.. ب‌

    فهرست مطالب... ت‌

    لیست جدول ها ذ‌

    لیست شکل ها ز‌

    لیست تصویرها ض‌

    لیست علایم و اختصارات.. ط‌

    1  فصل اول: مقدمه  1

    1-1 مقدمه  1

    1-2 سوختهای بیولوژیکی.. 2

    1-3 روشهای تولید سوختهای بیولوژیکی نسل دوم. 4

    1-3-1 فرایند تبدیل شیمیائی-حرارتی بیومس... 6

    1-3-1-1 تبدیل به گاز کردن بیومس... 6

    1-3-1-2 تخمیر گاز سنتز. 9

    1-4 مزیتهای بیوکاتالیستها 10

    1-5 تولید اتانول به عنوان سوخت بیولوژیکی.. 11

    1-6 طرح مساله و ضرورت انجام پروژه 14

    1-7 اهداف کلی پروژه 14

    1-8 اهداف و چهارچوب پروژه 15

    1-9 تقسیم بندی فصول پایان نامه. 17

    2  فصل دوم: مروری بر متون علمی   19

    2-1 مقدمه  19

    2-2 واکنش بیولوژیکی جابجائی آب-گاز 20

    2-3 باکتریهای استوژنیک.. 29

    2-3-1 کلستریدیوم لانگالی.. 34

    2-4 مسیر متابولیکی استوژنها 36

    2-5 عوامل موثر در تخمیر گاز سنتز. 42

    2-5-1 تاثیر ترکیب محیط کشت.. 42

    2-5-2 تاثیر منبع آلی.. 46

    2-5-3 تاثیر pH محیط کشت.. 49

    2-5-4 تاثیر عامل کاهنده 51

    2-5-5 تاثیر عناصر جزئی.. 54

    2-5-6 اثرات بازدارندگی در محیط تخمیر. 56

    2-5-7 محدودیتهای انتقال جرم. 58

    2-5-8 تاثیر فشار سوبسترای گازی.. 64

    3  فصل سوم: مواد مورد نیاز و روش کار 68

    3-1 مقدمه  68

    3-2 باکتری کلستریدیوم لانگالی.. 69

    3-3 محیط کشت باکتری لانگالی.. 70

    3-3-1 ترکیبات محیط کشت مایع. 72

    3-3-1-1 محلول عناصر جزئی.. 72

    3-3-1-2 محلول ویتامین ولف.. 72

    3-3-1-3 محلول عوامل کاهنده 73

    3-4 روش تهیه محیط کشت مایع. 73

    3-4-1 روش تهیه محیط کشت جامد. 75

    3-5 نحوه تکثیر باکتری لانگالی.. 75

    3-6 آزمایشهای ناپیوسته کشت لانگالی.. 79

    3-6-1 رشد باکتری با سوبسترای آلی.. 79

    3-6-1-1 تاثیر نوع سوبسترای آلی.. 79

    3-6-1-2 تاثیر غلظت سوبسترای آلی.. 80

    3-6-2 رشد باکتری با گاز سنتز. 81

    3-6-2-1 تاثیر همزمان عوامل کاهنده و pH اولیه محیط کشت.. 81

    3-6-2-2 تاثیر فشار اولیه گاز سنتز در بیوراکتورهای ناپیوسته. 83

    3-7 آزمایشهای پیوسته تخمیر گاز سنتز. 84

    3-7-1 تاثیر نرخ رقیق سازی.. 87

    3-7-2 تاثیر شدت جریان گاز سنتز و دور همزن. 88

    3-8 آنالیز نتایج   88

    3-8-1 اندازه گیری دانسیته سلولی.. 88

    3-8-2 آنالیز فروکتوز و گلوکز در محیط کشت.. 90

    3-8-3 آنالیز نمونه های مایع برای اتانول و استات.. 93

    3-8-4 آنالیز نمونه های گاز 94

    3-9 مدلهای کینتیکی و روش به دست آوردن آنها 95

    3-9-1 کینتیک رشد سلول. 95

    3-9-2 محاسبات انتقال جرم. 98

    3-9-2-1 انتقال جرم در سیستم ناپیوسته. 98

    3-9-2-2 انتقال جرم در سیستم پیوسته. 100

    3-9-3 نرخ واکنش... 102

    4 فصل چهارم: نتایج آزمایشها و تحلیل داده ها 103

    4-1 مقدمه  103

    4-2 تاثیر سوبسترای آلی.. 104

    4-2-1 رشد سلول و مصرف سوبسترا 104

    4-2-2 مسیر متابولیکی پیشنهاد شده برای لانگالی.. 108

    4-2-3 تولید محصول. 111

    4-2-4 تاثیر غلظت فروکتوز 115

    4-2-4-1 رشد سلول. 115

    4-2-4-2 تولید محصول. 118

    4-3 تاثیر همزمان عوامل کاهنده و pH.. 122

    4-3-1 رشد سلول. 123

    4-3-2 مصرف سوبسترای گازی.. 125

    4-3-3 تولید اتانول و استات.. 129

    4-3-4 بازده محصول. 133

    4-4 مطالعات کینتیکی.. 135

    4-4-1 کینتیک رشد سلول. 136

    4-4-2 کینتیک مصرف سوبسترای گازی.. 145

    4-4-3 بررسی کینتیک نرخ مصرف سوبسترای گازی و انتقال جرم. 147

    4-4-4 کینتیک مصرف سوبسترا 152

    4-5 آزمایشهای پیوسته تخمیر گاز سنتز در بیوراکتور 154

    4-5-1 تاثیر نرخ رقیق سازی.. 154

    4-5-1-1 دانسیته سلولی و pH محیط کشت.. 155

    4-5-1-2 مصرف سوبسترای گازی.. 157

    4-5-1-3 تولید محصول. 158

    4-5-2 تاثیر شدت جریان گاز و دور همزن. 159

    4-5-2-1 مصرف سوبسترای گازی.. 160

    4-5-2-2 تولید محصول. 162

    4-5-2-3 ضریب انتقال جرم در بیوراکتور 163

    4-5-2-4 بازده محصول. 169

    5 فصل پنجم: نتیجه گیری و پیشنهادات   172

    5-1 نتیجه گیری از آزمایشها 172

    5-2 ارائه پیشنهادات برای طرحهای آتی.. 175

    پیوست الف... 177

    پیوست ب.. 181

    6 مراجع. 187

    Abstract

    منبع:

    1            

     

    1-         A. Eisentraut, Sustainable Production of Second-Generation Biofuels: Potential and perspectives in major economies and developing countries, IEA Energy Papers 2010.

    2-         S. Naik, V.V. Goud, P.K. Rout, A.K. Dalai, Production of first and second generation biofuels: A comprehensive review, Renewable Sustainable Energy Rev 14 2010 578-597.

    3-         J. Ruane, A. Sonnino, A. Agostini, Bioenergy and the potential contribution of agricultural biotechnologies in developing countries, Biomass Bioenergy 34 2010 1427-1439.

    4-         T.D. Foust, A. Aden, A. Dutta, S. Phillips, An economic and environmental comparison of a biochemical and a thermochemical lignocellulosic ethanol conversion processes, Cellulose 16 2009 547-565.

    5-         R.E.H. Sims, W. Mabee, J.N. Saddler, M. Taylor, An overview of second generation biofuel technologies, Bioresour Technol 101 2010 1570-1580.

    6-         T. Damartzis, A. Zabaniotou, Thermochemical conversion of biomass to second generation biofuels through integrated process design--A review, Renewable Sustainable Energy Rev 15 2011 366-378.

    7-         A. Demirbas, Biofuels securing the planet's future energy needs, Energy Convers Manage 50 2009 2239-2249.

    8-         F. Demirbas, Biorefineries for biofuel upgrading: a critical review, Appl Energy 86 2009 S151-S161.

    9-         C. Piccolo, F. Bezzo, Ethanol from lignocellulosic biomass: a comparison between conversion technologies, Computer Aided Chemical Engineering 24 2007 1277-1282.

    10-       R.P. Datar, R.M. Shenkman, B.G. Cateni, R.L. Huhnke, R.S. Lewis, Fermentation of biomass-generated producer gas to ethanol, Biotechnol Bioeng 86 2004 587-594.

    11-       A. Ahmed, A.M. White, P. Hu, R.S. Lewis, R.L. Huhnke, Biofuels from Syngas.

    12-       M.J. Burk, C.H. Schilling, A.P. Burgard, J.D. Trawick, Methods and organisms for utililizing synthesis gas or other gaseous carbon sources and methanol, US Patent No. 7,803,589 2010.

    13-       Z.A.B.Z. Alauddin, P. Lahijani, M. Mohammadi, A.R. Mohamed, Gasification of lignocellulosic biomass in fluidized beds for renewable energy development: A review, Renewable Sustainable Energy Rev 14 2010 2852-2862.

    14-       H.N. Abubackar, M.C. Veiga, C. Kennes, Biological conversion of carbon monoxide: rich syngas or waste gases to bioethanol, Biofuels, Bioprod Biorefin 5 2011 93-114.

    15-       C. Piccolo, F. Bezzo, A techno-economic comparison between two technologies for bioethanol production from lignocellulose, Biomass Bioenergy 33 2009 478-491.

    16-       J. Mackaluso, The use of syngas derived from biomass and waste products to produce ethanol and hydrogen, MMG 445 Basic Biotechnology eJournal 3 2007 98-103.

    17-       D.W. Choi, D.C. Chipman, S.C. Bents, R.C. Brown, A Techno-economic Analysis of Polyhydroxyalkanoate and Hydrogen Production from Syngas Fermentation of Gasified Biomass, Appl Biochem Biotechnol 160 2010 1032-1046.

    18-       L. Mississippi Ethanol. Final report from Mississippi Ethanol LLC to the National Renewable Energy Laboratory. Report NREL/SR-510-31720, NREL, Golden, CO (USA); 2002.

    19-       J. Abrini, H. Naveau, E.J. Nyns, Clostridium autoethanogenum, sp. nov., an anaerobic bacterium that produces ethanol from carbon monoxide, Arch Microbiol 161 1994 345-351.

    20-       J.L. Gaddy, Biological production of ethanol from waste gases with Clostridium ljungdahlii, Us Patent No 6,136,577 2000.

    21-       J.H. Sim, A.H. Kamaruddin, W.S. Long, Biocatalytic conversion of CO to acetic acid by Clostridium aceticum--Medium optimization using response surface methodology (RSM), Biochem Eng J 40 2008 337-347.

    22-       M. Ackerson, E. Clausen, J. Gaddy. Biological conversion of synthesis gas. Arkansas Univ., Fayetteville,  AR (United States). Coll. of Engineering; 1992.

    23-       D.K. Kundiyana, R.L. Huhnke, M.R. Wilkins, Syngas fermentation in a 100-L pilot scale fermentor: Design and process considerations, J Biosci Bioeng 109 2010 492-498.

    24-       M.D. Bredwell, P. Srivastava, R.M. Worden, Reactor Design Issues for Synthesis Gas Fermentations, Biotechnol Progr 15 1999 834-844.

    25-       G. Madhukar, B. Elmore, H. Huckabay, Microbial conversion of synthesis gas components to useful fuels and chemicals, Appl Biochem Biotechnol 57 1996 243-251.

    26-       D. Kim, I.S. Chang, Electricity generation from synthesis gas by microbial processes: CO fermentation and microbial fuel cell technology, Bioresour Technol 100 2009 4527-4530.

    27-       M.S. Elshahed, Microbiological aspects of biofuel production: Current status and future directions, J Adv Res 1 2010 103-111.

    28-       M. Koِpke, C. Held, S. Hujer, H. Liesegang, A. Wiezer, A. Wollherr, A. Ehrenreich, W. Liebl, G. Gottschalk, P. Dürre, Clostridium ljungdahlii represents a microbial production platform based on syngas, Proceedings of the National Academy of Sciences 107 2010 13087-13092.

    29-       M. Kِpke, C. Mihalcea, J.C. Bromley, S.D. Simpson, Fermentative production of ethanol from carbon monoxide, Curr Opin Biotechnol 22 2011 1-6.

    30-       J.L. Gaddy, G.J. Chen, Bioconversion of waste biomass to useful products, Us Patent No 5,821,111 1998.

    31-       G. Najafpour, H. Younesi, A.R. Mohamed, Bioconversion of waste gas into biofuel via fermentation in a continious stirred tank bioreactor, Malaysian Journal of Microbiology 1 2005  12-17.

    32-       H. Younesi, G. Najafpour, K.S. Ku Ismail, A.R. Mohamed, A.H. Kamaruddin, Biohydrogen production in a continuous stirred tank bioreactor from synthesis gas by anaerobic photosynthetic bacterium: Rhodopirillum rubrum, Bioresour Technol 99 2008 2612-2619.

    33-       G. Yeol Jung, J. Rae Kim, H. Ok Jung, J.Y. Park, S. Park, A new chemoheterotrophic bacterium catalyzing water-gas shift reaction, Biotechnol Lett 21 1999 869-873.

    34-       P.C. Maness, P.F. Weaver, Biological H2 from fuel gases and from H2O, Proceedings of the 2000 US Department of Energy Hydrogen Program Review 2000 9-11.

    35-       S. Robaire. Biological Hydrogen Production using Citrobacter amalonaticus Y19 to Catalyze the Water-Gas Shift Reaction.  Chemical and Biological Engineering: The University of British Columbia; 2008.

    36-       G. Najafpour, H. Younesi, A. Mohamed, Continuous hydrogen production via fermentation of synthesis gas, Pet Coal 45 2003 154-158.

    37-       W. Mérida, P.C. Maness, R.C. Brown, D.B. Levin, Enhanced hydrogen production from indirectly heated, gasified biomass, and removal of carbon gas emissions using a novel biological gas reformer, Int J Hydrogen Energy 29 2004 283-290.

    38-       R.Y. Zhu, J.L. Li, Hydrogen metabolic pathways of Rhodospirillum rubrum under artificial illumination, Chin Sci Bull 55 2010 32-37.

    39-       P.C. Maness, P.F. Weaver, Hydrogen production from a carbon-monoxide oxidation pathway in Rubrivivax gelatinosus, Int J Hydrogen Energy 27 2002 1407-1411.

    40-       G. Najafpour, R. Basu, E. Clausen, J. Gaddy, Bioreactor Scale-Up for Water-Gas Shift Reaction, International Journal of Engineering 9 1996 121.

    41-       J. Phillips, K. Klasson, E. Clausen, J. Gaddy, Biological production of ethanol from coal synthesis gas, Appl Biochem Biotechnol 39 1993 559-571.

    42-       K. Braun, G. Gottschalk, Effect of molecular hydrogen and carbon dioxide on chemo-organotrophic growth of Acetobacterium woodii and Clostridium aceticum, Arch Microbiol 128 1981 294-298.

    43-       R. Kerby, J. Zeikus, Growth of Clostridium thermoaceticum on H2/CO2 or CO as energy source, Current Microbiology 8 1983 27-30.

    44-       S. Sakai, Y. Nakashimada, H. Yoshimoto, S. Watanabe, H. Okada, N. Nishio, Ethanol production from H2 and CO2 by a newly isolated thermophilic bacterium, Moorella sp. HUC22-1, Biotechnol Lett 26 2004 1607-1612.

    45-       K. Klasson, M. Ackerson, E. Clausen, J. Gaddy, Bioreactor design for synthesis gas fermentations, Fuel 70 1991 605-614.

    46-       R.S. Tanner, L.M. Miller, D. Yang, Clostridium ljungdahlii sp. nov., an acetogenic species in clostridial rRNA homology group I, Int J Syst Bacteriol 43 1993 232-236.

    47-       W.H. Lorowitz, M.P. Bryant, Peptostreptococcus productus strain that grows rapidly with CO as the energy source, Appl Environ Microbiol 47 1984 961-964.

    48-       T.D. Allen, M.E. Caldwell, P.A. Lawson, R.L. Huhnke, R.S. Tanner, Alkalibaculum bacchi gen. nov., sp. nov., a CO-oxidizing, ethanol-producing acetogen isolated from livestock-impacted soil, Int J Syst Evol Microbiol 60 2010 2483-2489.

    49-       J.S.C. Liou, D.L. Balkwill, G.R. Drake, R.S. Tanner, Clostridium carboxidivorans sp. nov., a solvent-producing clostridium isolated from an agricultural settling lagoon, and reclassification of the acetogen Clostridium scatologenes strain SL1 as Clostridium drakei sp. nov, Int J Syst Evol Microbiol 55 2005 2085.

    50-       A. Grethlein, R. Worden, M. Jain, R. Datta, Continuous production of mixed alcohols and acids from carbon monoxide, Appl Biochem Biotechnol 24 1990 875-884.

    51-       S. Rajagopalan, Formation of ethanol from carbon monoxide via a new microbial catalyst, Biomass Bioenergy 23 2002 493-487.

    52-       S. Chatterjee, A.J. Grethlein, R. Mark Worden, M.K. Jain, Evaluation of support matrices for an immobilized cell gas lift reactor for fermentation of coal derived synthesis gas, J Ferment Bioeng 81 1996 158-162.

    53-       G. Bruant, M.J. Lévesque, C. Peter, S.R. Guiot, L. Masson, N. Ahmed, Genomic Analysis of Carbon Monoxide Utilization and Butanol Production by Clostridium carboxidivorans Strain P7T, PloS one 5 2010 1-12.

    54-       R.S. Lewis, R.S. Tanner, R.L. Huhnke, Indirect or direct fermentation of biomass to fuel alcohol, Us Patent Pub No 2007/0275447 A1 2006.

    55-       H. Heiskanen, I. Virkajärvi, L. Viikari, The effect of syngas composition on the growth and product formation of Butyribacterium methylotrophicum, Enzyme Microb Technol 41 2007 362-367.

    56-       A. Amos, Biological Water-Gas Shift Conversion of Carbon Monoxide to Hydrogen, Milestone Completion Report, National Renewable Energy Laboratory (NREL) MP-560-35592 2004.

    57-       D. Antoni, V.V. Zverlov, W.H. Schwarz, Biofuels from microbes, Appl Microbiol Biotechnol 77 2007 23-35.

    58-       Y.K. Oh, Y.J. Kim, J.Y. Park, T.H. Lee, M.S. Kim, S. Park, Biohydrogen production from carbon monoxide and water by Rhodopseudomonas palustris P4, Biotechnol Bioprocess Eng 10 2005 270-274.

    59-       G.Y. Jung, J.R. Kim, J.Y. Park, S. Park, Hydrogen production by a new chemoheterotrophic bacterium Citrobacter sp. Y19, Int J Hydrogen Energy 27 2002 601-610.

    60-       E. Oelgeschlager, M. Rother, Carbon monoxide-dependent energy metabolism in anaerobic bacteria and archaea, Arch Microbiol 190 2008 257-269.

    61-       G. Najafpour, H. Younesi, A.R. Mohamed, A survey on various carbon sources for biological hydrogen production via the water-gas reaction using a photosynthetic bacterium (Rhodospirillum rubrum), Energy Sources Part A 28 2006 1013-1026.

    62-       G. Najafpour, K.S.K. Ismail, H. Younesi, A. Mohamed, A. Harun, Performance of biological hydrogen production process from synthesis gas, mass transfer in batch and continuous bioreactors, Int J Eng Trans B 17 2004 105-120.

    63-       K. Syahidah, K. Ismail, N. Ghasem, Y. Habibollah, H.K. Azlina, Biological hydrogen production from CO: Bioreactor performance, Biochem Eng J 39 2008 468-477.

    64-       E. Wolfrum, P. Weaver. Bioreactor development for biological hydrogen production. 2000.

    65-       S.A. Markov, P.F. Weaver, Bioreactors for H2 Production by Purple Nonsulfur Bacteria, Appl Biochem Biotechnol 145 2008 79-86.

    66-       S.A. Markov, Bioreactors for Hydrogen Production, Biohydrogen 1999 383-390.

    67-       K. Klasson, A. Gupta, E. Clausen, J. Gaddy, Evaluation of mass-transfer and kinetic parameters for Rhodospirillum rubrum in a continuous stirred tank reactor, Appl Biochem Biotechnol 39 1993 549-557.

    68-       P. Maness, K. Magrini, S. Smolinski, A. Dillon, M. Heben, P. Weaver, Applications of a biological water-gas shift reaction using unique photosynthetic bacteria.

    69-       G. Najafpour, K.S.K. Ismail, H. Younesi, A.R. Mohamed, A.H. Kamaruddin, Hydrogen as clean fuel via continuous fermentation by anaerobic photosynthetic bacteria, Rhodospirillum rubrum, Afr J Biotechnol 3 2004 503-507.

    70-       G. Najafpour, H. Younesi, Bioconversion of synthesis gas to hydrogen using a light-dependent photosynthetic bacterium, Rhodospirillum rubrum, World Journal of Microbiology and Biotechnology 23 2007 275-284.

    71-       G.Y. Jung, H.O. Jung, J.R. Kim, Y. Ahn, S. Park, Isolation and characterization of Rhodopseudomonas palustris P4 which utilizes CO with the production of H2, Biotechnol Lett 21 1999 525-529.

    72-       Y.Q. Nie, H. Liu, G.C. Du, J. Chen, Acetate yield increased by gas circulation and fed-batch fermentation in a novel syntrophic acetogenesis and homoacetogenesis coupling system, Bioresour Technol 99 2008 2989-2995.

    73-       B.J. Ni, H. Liu, Y.Q. Nie, R.J. Zeng, G.C. Du, J. Chen, H.Q. Yu, Coupling glucose fermentation and homoacetogenesis for elevated acetate production: Experimental and mathematical approaches, Biotechnol Bioeng 108 2010 345-353.

    74-       G. Diekert, G. Wohlfarth, Metabolism of homoacetogens, Antonie van Leeuwenhoek 66 1994 209-221.

    75-       J.H. Sim, A.H. Kamaruddin, W.S. Long, G. Najafpour, Clostridium aceticum--A potential organism in catalyzing carbon monoxide to acetic acid: Application of response surface methodology, Enzyme Microb Technol 40 2007 1234-1243.

    76-       J.H. Sim. Bioconversion of carbon monoxide gas to acetic acid using clostridium aceticum in batch and continous fermentations [TP248. A18 S588 2006 f rb]. Universiti Sains Malaysia; 2006.

    77-       S. Sakai, Y. Nakashimada, K. Inokuma, M. Kita, H. Okada, N. Nishio, Acetate and ethanol production from H2 and CO2 by Moorella sp. using a repeated batch culture, J Biosci Bioeng 99 2005 252-258.

    78-       J.L. Gaddy, E.C. Clausen, Clostridiumm ljungdahlii, an anaerobic ethanol and acetate producing microorganism, Us Patent No 5,173,429 1992.

    79-       J.L. Cotter, M.S. Chinn, A.M. Grunden, Influence of process parameters on growth of Clostridium ljungdahlii and Clostridium autoethanogenum on synthesis gas, Enzyme Microb Technol 44 2009 281-288.

    80-       Y. Guo, J. Xu, Y. Zhang, H. Xu, Z. Yuan, D. Li, Medium optimization for ethanol production with Clostridium autoethanogenum with carbon monoxide as sole carbon source, Bioresour Technol 101 2010 8784-8789.

    81-       R. Worden, A. Grethlein, J. Zeikus, R. Datta, Butyrate production from carbon monoxide by Butyribacterium methylotrophicum, Appl Biochem Biotechnol 20 1989 687-698.

    82-       H. Younesi, G. Najafpour, A.R. Mohamed, Ethanol and acetate production from synthesis gas via fermentation processes using anaerobic bacterium, Clostridium ljungdahlii, Biochem Eng J 27 2005 110-119.

    83-       D.K. Kundiyana, R.L. Huhnke, P. Maddipati, H.K. Atiyeh, M.R. Wilkins, Feasibility of Incorporating Cotton Seed Extract in Clostridium strain P11 Fermentation Medium During Synthesis Gas Fermentation, Bioresour Technol 101 2010 9673-9680.

    84-       I.S. Chang, B.H. Kim, D.H. Kim, R.W. Lovitt, H.C. Sung, Formulation of defined media for carbon monoxide fermentation by Eubacterium limosum KIST612 and the growth characteristics of the bacterium, J Biosci Bioeng 88 1999 682-685.

    85-       I. Chang, D. Kim, B.H. Kim, P.K. Shin, H. Sung, R.W. Lovitt, CO fermentation of Eubacterium limosum KIST612, J Microbiol Biotechnol 8 1998 134-140.

    86-       J.R. Phillips, E.C. Clausen, J.L. Gaddy, Synthesis gas as substrate for the biological production of fuels and chemicals, Appl Biochem Biotechnol 45 1994 145-157.

    87-       D.K. Kundiyana, M.R. Wilkins, P. Maddipati, R.L. Huhnke, Effect of temperature, pH and buffer presence on ethanol production from synthesis gasby, Bioresour Technol 2011.

    88-       M. Kopke, C. Held, S. Hujer, H. Liesegang, A. Wiezer, A. Wollherr, A. Ehrenreich, W. Liebl, G. Gottschalk, P. Dürre, Clostridium ljungdahlii represents a microbial production platform based on syngas, Proceedings of the National Academy of Sciences 107 2010 13087-13092.

    89-       H.L. Drake, S.L. Daniel, Physiology of the thermophilic acetogen Moorella thermoacetica, Res Microbiol 155 2004 422-436.

    90-       P.C. Munasinghe, S.K. Khanal, Biomass-derived syngas fermentation into biofuels: Opportunities and challenges, Bioresour Technol 101 2010 5013-5022.

    91-       A.M. Henstra, J. Sipma, A. Rinzema, A.J.M. Stams, Microbiology of synthesis gas fermentation for biofuel production, Curr Opin Biotechnol 18 2007 200-206.

    92-       L. Ljungdhal, The autotrophic pathway of acetate synthesis in acetogenic bacteria, Annual Reviews in Microbiology 40 1986 415-450.

    93-       J.L. Cotter, M.S. Chinn, A.M. Grunden, Ethanol and acetate production by Clostridium ljungdahlii and Clostridium autoethanogenum using resting cells, Bioprocess Biosyst Eng 32 2009 369-380.

    94-       P.C. Maness, P.F. Weaver, Production of poly-3-hydroxyalkanoates from CO and H2 by a novel photosynthetic bacterium, Appl Biochem Biotechnol 45 1994 395-406.

    95-       Y.S. Do, J. Smeenk, K.M. Broer, C.J. Kisting, R. Brown, T.J. Heindel, T.A. Bobik, A.A. DiSpirito, Growth of Rhodospirillum rubrum on synthesis gas: Conversion of CO to H2 and poly--hydroxyalkanoate, Biotechnol Bioeng 97 2007 279-286.

    96-       O. Tirado-Acevedo. Production of Bioethanol from Synthesis Gas Using Clostridium ljungdahlii as a Microbial Catalyst. North Carolina State University; 2010.

    97-       G. Najafpour, H. Younesi, K. Ismail, A. Mohamed, A. Kamaruddin, Photobiological Hydrogen Production from Synthesis Gas: Carbon Sources, KLa and Kinetics Evaluation, Developments in Chemical Engineering and Mineral Processing 13 2005 549-562.

    98-       M.P. Devi, S.V. Mohan, G. Mohanakrishna, P. Sarma, Regulatory influence of CO2 supplementation on fermentative hydrogen production process, Int J Hydrogen Energy 35 2010 10701-10709.

    99-       J.H. Sim, A.H. Kamaruddin, Optimization of acetic acid production from synthesis gas by chemolithotrophic bacterium-Clostridium aceticum using statistical approach, Bioresour Technol 99 2008 2724-2735.

    100-     J. Wiegel, R. Tanner, F.A. Rainey, An introduction to the family of Clostridiaceae, The Prokaryotes 2 2006 654–678.

    101-     P. Hu, L.T. Jacobsen, J.G. Horton, R.S. Lewis, Sulfide assessment in bioreactors with gas replacement, Biochem Eng J 49 2010 429-434.

    102-     J. Saxena, R.S. Tanner, Effect of trace metals on ethanol production from synthesis gas by the ethanologenic acetogen, Clostridium ragsdalei, J Ind Microbiol Biotechnol 2010.

    103-     R.L. Huhnke, R.S. Lewis, R.S. Tanner, Isolation and characterization of novel clostridial species, Us Patent Pub No 2010/0203606 A1 2010.

    104-     S.S. Adams, S. Scott, C. Ko. Method for sustaining microorganism culture in syngas fermentation process in decreased concentration or absence of various substrates. US Patent App. 20,100/227,377; 2010.

    105-     G. Najafpour, H. Younesi, A.R. Mohamed, Effect of organic substrate on hydrogen production from synthesis gas using Rhodospirillum rubrum, in batch culture, Biochem Eng J 21 2004 123-130.

    106-     A. Ahmed, R.S. Lewis, Fermentation of biomass generated synthesis gas: Effects of nitric oxide, Biotechnol Bioeng 97 2007 1080-1086.

    107-     A.J. Ungerman, T.J. Heindel, Carbon monoxide mass transfer for syngas fermentation in a stirred tank reactor with dual impeller configurations, Biotechnol Progr 23 2007 613-620.

    108-     P.C. Munasinghe, S.K. Khanal, Syngas fermentation to biofuel: Evaluation of carbon monoxide mass transfer coefficient (kLa) in different reactor configurations, Biotechnol Progr 2010.

    109-     K. Klasson, J. Cowger, C. Ko, J. Vega, E. Clausen, J. Gaddy, Methane production from synthesis gas using a mixed culture of R. rubrum M. barkeri, and M. formicicum, Appl Biochem Biotechnol 24 1990 317-328.

    110-     H. Zhu, B.H. Shanks, T.J. Heindel, Enhancing CO-Water Mass Transfer by Functionalized MCM41 Nanoparticles, Ind Eng Chem Res 47 2008 7881-7887.

    111-     H. Zhu, B.H. Shanks, D.W. Choi, T.J. Heindel, Effect of functionalized MCM41 nanoparticles on syngas fermentation, Biomass Bioenergy 34 2010 1624-1627.

    112-     J. Vega, S. Prieto, B. Elmore, E. Clausen, J. Gaddy, The biological production of ethanol from synthesis gas, Appl Biochem Biotechnol 20 1989 781-797.

    113-     I.S. Chang, B.H. Kim, R.W. Lovitt, J.S. Bang, Effect of CO partial pressure on cell-recycled continuous CO fermentation by Eubacterium limosum KIST612, Process Biochem 37 2001 411-421.

    114-     K.M. Hurst, R.S. Lewis, Carbon monoxide partial pressure effects on the metabolic process of syngas fermentation, Biochem Eng J 48 2010 159-165.

    115-     G. Najafpour, H. Younesi, Ethanol and acetate synthesis from waste gas using batch culture of Clostridium ljungdahlii, Enzyme Microb Technol 38 2006 223-228.

    116-     D. G. Peacock, J.F. Richardson, Chemical and Biochemical Reactors & Process Control, Vol. 3, 3rd  Ed.,  1999 Elsevier Science & Technology

    117-     S. Wang, Y. Zhang, H. Dong, S. Mao, Y. Zhu, R. Wang, G. Luan, Y. Li, Formic Acid Triggers the" Acid Crash" of Acetone-Butanol-Ethanol Fermentation by Clostridium acetobutylicum, Appl Environ Microbiol 77 2011 1674-1680.

    118-     P. Hols, A. Ramos, J. Hugenholtz, J. Delcour, W.M. De Vos, H. Santos, M. Kleerebezem, Acetate utilization in Lactococcus lactis deficient in lactate dehydrogenase: a rescue pathway for maintaining redox balance, J Bacteriol 181 1999 5521-5526.

    119-     T. Ezeji, N. Qureshi, H. Blaschek, Acetone butanol ethanol (ABE) production from concentrated substrate: reduction in substrate inhibition by fed-batch technique and product inhibition by gas stripping, Appl Microbiol Biotechnol 63 2004 653-658.

    120-     I. Maddox, E. Steiner, S. Hirsch, S. Wessner, N. Gutierrez, J. Gapes, K. Schuster, The Cause of "Acid Crash" and "Acidogenic Fermentations" During the Batch Acetone-Butanol-Ethanol(ABE-) Fermentation Process, J Mol Microbiol Biotechnol 2 2000 95-100.

    121-     M.H. Hansen, K. Ingvorsen, B.B. Jorgensen, Mechanisms of hydrogen sulfide release from coastal marine sediments to the atmosphere, Limnology and Oceanography 1978 68-76.

    122-     J.E. Bailey, D.F. Ollis, Biochemical engineering fundamentals, 2nd edition, McGraw-Hill, New York, 1986.

    123-     J.L. Vega, V.L. Holmberg, E.C. Clausen, J.L. Gaddy, Fermentation parameters of Peptostreptococcus productus on gaseous substrates (CO, H2/CO2), Archives of microbiology 151 1988 65-70.

    124-     J. Luong, Generalization of Monod kinetics for analysis of growth data with substrate inhibition, Biotechnology and bioengineering 29 1987 242-248.

    125-     F. Garcia-Ochoa, E. Gomez, Bioreactor scale-up and oxygen transfer rate in microbial processes: An overview, Biotechnology advances 27 2009 153-176.

    126-     J.C. Gabelle, F. Augier, A. Carvalho, R. Rousset, J. Morchain, Effect of tank size on kLa and mixing time in aerated stirred reactors with non-newtonian fluids, The Canadian Journal of Chemical Engineering 89 2011 1139-1153.

    127-     G.D. Najafpour. Biochemical engineering and biotechnology, Amsterdam, Elsevier Science; 2006.

    128-     Geankoplis, C.J. Transport Processes and Separation Process Principles. Fourth Edition. 2003 New Jersey: Prentice Hall


موضوع پایان نامه تولید اتانول و استات از گاز سنتز با استفاده از باکتری کلستریدیوم لانگالی, نمونه پایان نامه تولید اتانول و استات از گاز سنتز با استفاده از باکتری کلستریدیوم لانگالی, جستجوی پایان نامه تولید اتانول و استات از گاز سنتز با استفاده از باکتری کلستریدیوم لانگالی, فایل Word پایان نامه تولید اتانول و استات از گاز سنتز با استفاده از باکتری کلستریدیوم لانگالی, دانلود پایان نامه تولید اتانول و استات از گاز سنتز با استفاده از باکتری کلستریدیوم لانگالی, فایل PDF پایان نامه تولید اتانول و استات از گاز سنتز با استفاده از باکتری کلستریدیوم لانگالی, تحقیق در مورد پایان نامه تولید اتانول و استات از گاز سنتز با استفاده از باکتری کلستریدیوم لانگالی, مقاله در مورد پایان نامه تولید اتانول و استات از گاز سنتز با استفاده از باکتری کلستریدیوم لانگالی, پروژه در مورد پایان نامه تولید اتانول و استات از گاز سنتز با استفاده از باکتری کلستریدیوم لانگالی, پروپوزال در مورد پایان نامه تولید اتانول و استات از گاز سنتز با استفاده از باکتری کلستریدیوم لانگالی, تز دکترا در مورد پایان نامه تولید اتانول و استات از گاز سنتز با استفاده از باکتری کلستریدیوم لانگالی, تحقیقات دانشجویی درباره پایان نامه تولید اتانول و استات از گاز سنتز با استفاده از باکتری کلستریدیوم لانگالی, مقالات دانشجویی درباره پایان نامه تولید اتانول و استات از گاز سنتز با استفاده از باکتری کلستریدیوم لانگالی, پروژه درباره پایان نامه تولید اتانول و استات از گاز سنتز با استفاده از باکتری کلستریدیوم لانگالی, گزارش سمینار در مورد پایان نامه تولید اتانول و استات از گاز سنتز با استفاده از باکتری کلستریدیوم لانگالی, پروژه دانشجویی در مورد پایان نامه تولید اتانول و استات از گاز سنتز با استفاده از باکتری کلستریدیوم لانگالی, تحقیق دانش آموزی در مورد پایان نامه تولید اتانول و استات از گاز سنتز با استفاده از باکتری کلستریدیوم لانگالی, مقاله دانش آموزی در مورد پایان نامه تولید اتانول و استات از گاز سنتز با استفاده از باکتری کلستریدیوم لانگالی, رساله دکترا در مورد پایان نامه تولید اتانول و استات از گاز سنتز با استفاده از باکتری کلستریدیوم لانگالی

پایان نامه کارشناسی ارشد رشته مهندسی شیمی- بیوتکنولوژی چکیده منابع انرژی رو به زوال سوخت‌های فسیلی، جامعه رو به توسعه انسانی را در آینده‌ای نه‌چندان دور دچار کمبود سوخت می‌سازند. در نتیجه نگرانی­های انتشار پیوسته و در حال افزایش دی­اکسید کربن به اتمسفر و همچنین وسعت آلودگی ناشی از سوخت‌های فسیلی که زندگی در کره خاکی را دچار مشکل ساخته است، نیاز به منابع انرژی از منابع تجدیدپذیر ...

پایان نامه کارشناسی ارشد در رشته مهندسی شیمی چکیده شبیه‌سازی و بهینه‌سازی راکتور بیولوژیکی تولیدکننده بوتانول تخمیر نیمه پیوسته، روشی کارا و سودمند جهت تولید محصولات متابولیکی ارزشمند مانند سوخت های زیستی می باشد. مدلسازی ریاضی بیوراکتورهای نیمه پیوسته با توجه به طبیعت گذرا و ناپایای تخمیر و همچنین پیچیدگی متابولیسم سلولی، مسأله ای بسیار دشوار و پیچیده است. در این زمینه برخی از ...

پایان نامه کارشناسی ارشد گروه شیمی، گرایش شیمی آلی چکیده یک روش موثر برای سنتز مشتقات پیریدو [3،2-d]پیریمیدین از تراکم سه جزئی 6- آمینواوراسیل، 6-آمینو2-تیواوراسیل یا 6-آمینو-1،3-دی متیل اوراسیل با آریل آلدهید ها و مالونونیتریل، یک دسته از مشتقات پیریدو[3،2-d]پیریمیدین در مجاورت کاتالیزگرهای بازی با کارایی بالا، در آب به عنوان یک حلال سبز در شرایط رفلاکس تهیه شد. کلید واژه ها: ...

پایان نامه‎ی کارشناسی ارشد در رشته‎ی نانومهندسی شیمی چکیده سنتز نانو ذرات سیلیکون دی اکسید از ضایعات روغن سیلیکون با استفاده از روش تف زاد نانو ذرات دی اکسید سیلیسیوم سنتزی[1] دارای کاربردهای صنعتی فراوانی می باشد. استفاده صنعتی از این ذرات در حوزه های سنتی و نیز حوزه های جدید در حال گسترش است که به طور مستمر کاربردهای جدیدی برای آن یافت می شود.SAS در زمینه های کاتالیست، ...

پایان نامه مقطع کارشناسی ارشد رشته: مهندسی شیمی چکیده در این تحقیق، مدل دو بعدی جامعی بر اساس روش عناصر محدود (FEM) ، برای مدل سازی تماس دهنده‌های غشائی گاز-حلال جهت حذف دی‌اکسید کربن[1] از گاز سنتز پیشنهاد شده است. محلول آبی مونو اتانول آمین به عنوان جریان حلال جاذب و مخلوط گازی CO2/N2 به عنوان جریان گازی استفاده شده است. حلال جاذب در درون لوله و مخلوط گازی بصورت ناهمسو با حلال ...

پايان نامه براي دريافت درجه کارشناسي ارشد M.Sc رشته مهندسي صنايع چوب و کاغذ مهر 1393 چکيده :  در اين پژوهش، خواص فيزيکي و مکانيکي نانوکامپوزيتهاي حاصل از نانوفيبر سلولز وپليمر پلي&sh

پایان نامه جهت اخذ درجه کارشناسی ارشد رشته شیمی تجزیه فلوئورید از سالها قبل بعنوان یک یون سمی شناخته شده است. منبع اصلی فلوئورید در محلولهای آبی سنگهای معدنی حاوی فلوئورید و فعالیت های صنعتی کارخانه ها می­باشد. بر طبق گزارش سازمان حفاظت محیط زیست مقدار فلوئورید بیش از ١ میلی­گرم بر لیتر باعث بروز بیماریهای مختلف می­شود. در این تحقیق از ماده بیوپلیمری بنام زئین بعنوان جاذب برای ...

پایان نامه برای دریافت درجه کارشناسی ارشد (M.Sc.) در رشته مهندسی علوم و صنایع غذایی گرایش میکروبیولوژی مواد غذایی چکیده یکی از راهکارهای موثر در بهبود کیفیت نان و فرآورده های پخت، بهینه سازی شرایط تخمیر محصول است. تخمیر مناسب علاوه بر افزایش ارزش تغذیه ای نان، باعث بهبود خواص رئولوژیکی خمیر و نیز ویژگی های حسی و ماندگاری محصول نهایی می شود. در همین رابطه انتخاب سویه مخمری مناسب، ...

- مقدمه در بین حیوانات اهلی گیاهخوار، نشخوارکنندگان سهم بزرگی را در تامین خوراک و سلامت بشر دارند. از طرفی تغذیه نقش اصلی را در بازده اقتصادی و عملکردی این دام‌ها داشته به طوری که تقریبا دوسوم از کل هزینه تولیدات دامی در واحدهای مختلف پرورش دام به هزینه‌های خوراک اختصاص داشته و از طرفی با توجه به مسئله کمبود پروتئین حیوانی و افزایش تولید با منابع علوفه‌ای موجود، لازم است تا از ...

پایان‌نامه کارشناسی ارشد مهندسی شیمی چکیده در چند دهه اخیر به دلیل رشد جمعیت و همچنین ارتقاء سطح استانداردهای زندگی مصرف الیاف و به دنبال آن تولید مواد پسماند نساجی به شدت افزایش یافته‌است. از عمده‌ترین راهکارهای مدیریت مواد پسماند نساجی دفن و سوزاندن است که این راهکارها اثرات تخریبی زیست محیطی بدنبال دارند. این درحالی است که بخش عمده‌ای از این مواد پسماند قابلیت تبدیل به ...

ثبت سفارش